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Publicações De Chuva

2025

1. Ele, Q., Tuo, Y., Zhou, Y. et al. O RT-QPCR baseado em MB aumenta a aplicação clínica do DNA do CFEBV para NPC na área não endêmica da China. Rep 15, 9186 (2025). https://doi.org/10.1038/S41598-025-93406-6. Se 3.8

2024

1. Mu H, Zou J, Zhang H. (2024). Detecção quantitativa de mutações T315I de BCR :: ABL1 usando reação em cadeia da polimerase de gotículas digitais. Célula de hematol transfus ther. 17: S2531-1379 (24) 00030-0. doi: 10.1016/j.htct.2023.12.007. Se: 2.1
 

2. Zhao Z, Wang Y, Kang Y, et al. (2024). Um estudo retrospectivo da detecção de patógenos de sepse comparando a cultura do sangue e a PCR digital independente da cultura. Heliyon. 10 (6): E27523. doi: 10.1016/j.heliyon.2024.e27523. Se: 3.4

 

3. Mao S, Lin Y, Qin X, et al. (2024). PCR digital de gotículas: um método eficaz para monitorar e avaliar prognóstico da doença residual mínima em JMML. Br J Hematol. 204 (6): 2332-2341. doi: 10.1111/bjh.19465. Se: 6.5

 

4. Wang L, Tian W, Zhang W, et al. (2024). Um modelo de aprendizado de máquina para prever sepse com base em um ensaio otimizado para sequenciamento de DNA sem células microbianas. Clin Chim Acta. 559: 119716. doi: 10.1016/j.cca.2024.119716. Se: 3.2

 

5. Chen J, Liu X, Zhang Z, et al. (2024). Marcadores de diagnóstico precoces para carcinoma de células escamosas esofágicas: identificação de genes de alteração do número de cópias e detecção de cfDNA. Investimento de laboratório. 104 (10): 102127. doi: 10.1016/j.labinv.2024.102127. Se 5.2

 

6. Ele Y, Dong L, Yan W, et al. (2024). Um sistema de PCR multiplex para a detecção e quantificação de quatro eventos de soja geneticamente modificados. Praça de pesquisa. doi: 10.21203/rs.3.rs-4766822/v1.

 

7. Dong L, Xu Q, Shen L, et al. (2024). Easynat malária: um método simples e rápido para detectar espécies de Plasmodium usando tecnologia de amplificação cruzada. Espectr Microbiol. 12 (8): E0058324. doi: 10.1128/spectrum.00583-24. Se: 3.7

 

2023

1. Dong L, Li W, Xu Q, et al. (2023). Um rápido ensaio multiplex de parasitas da malária humana por PCR digital. Clin Chim Acta. 539: 70-78. doi: 10.1016/j.cca.2022.12.001. Se: 3.2

 

2. Ma C, Yuan M, Gong P, et al. (2023). Projeto de um sistema de detecção óptica de PCR digital com várias microdropletas fluorescentes. Appl Opt. 62 (1): 183-195. doi: 10.1364/AO.479774. Se: 1.7

 

3. Fei Z, Liu P, Cheng C, et al. (2023). Contas magnéticas responsivas à solvente para detecção precisa de SARS-CoV-2. Interfaces APP Appl Mater. 15 (4): 4924-4934. doi: 10.1021/acsami.2c18684. Se: 8.3

 

4. Fei Z, Gupta N, Li M, et al. (2023). Rumo ao carregamento altamente eficaz do DNA em hidrogéis para armazenamento de informações de alta densidade e longo prazo. Sci Adv. 9 (19): EADG9933. doi: 10.1126/sciadv.adg9933. Se: 11.7

 

5. Rubio-Monterde A, Quesada-González D, Merkoçi A. (2023). Em direção a testes de diagnóstico de fluxo lateral molecular integrado usando micro e nanotecnologia avançada. Anal Chem. 95 (1): 468-489. doi: 10.1021/acs.analchem.2c04529. Se: 6.8

 

6. Kopylova KV, Kasparov EW, Marchenko IV, et al. (2023). PCR digital como uma ferramenta de diagnóstico altamente sensível: uma revisão. Mol Bio (Mosk) . 57 (5): 771-781. doi: 10.31857/s0026898423050051 . [Artigo em russo] se: 1.5

 

7. Song W, Bai YY, Hu JH, et al (2023). Lactobacillus coryniformis subsp.torquens inibe a perda óssea em camundongos obesos por modificação da microbiota intestinal. Food Funct. 14 (10): 4522-4538. doi: 10.1039/d2fo03863c. Se: 5.1

 

8. Zoure AA, Compaore TR, Bere JA, et al. (2023). Avaliação comparativa do sistema automatizado de purificação do Kingfisher Flex 96 (Thermofisher Scientific) e métodos manuais de extração de RNA viral do Qiaamp RNA (Qiagen) para SARS-CoV-2. AFR J Clin Exp Micro. 24 (1): 16-23. Se: 0.4

 

2022

1. Soubeiga, St, Charlotte K, Zoure AA, et al. (2022). Triagem de variantes SARS-CoV-2 em Burkina Faso. J med microbiol infect dis. 10 (3), 135-140. doi: 10.52547/jommid.10.3.135 . Se: 0.4

 

2. Lu R, Wang J, Li M, et al. (2022). Detecção quantitativa retrospectiva de SARS-CoV-2 por PCR digital mostrando alta precisão para amostras de baixa carga viral. J infect dev Ctries. 16 (1), 10-15. doi: 10.3855/jidc.15315. Se: 1.4

 

3. Zoure AA, Ouedraogo HG, Sagna T, et al. (2022). Diagnóstico molecular de covid-19 em Burkina Faso: desafio bem-sucedido. Int J Bio Chem Sci. 16 (1), 440-463. doi: 10.4314/ijbc.v16i1.37 . Se: 2.17

 

4. Fei Z, Li M, Cheng C, et al. (2022). Hidrogéis termo-responsivos (melhores) de estrutura biônica com camada controlável para armazenamento de dados de DNA de alta capacidade. Nano selecione. doi: 10.1002/nano.202200168 . Se: 3.8

 

5. Wang K, Sang B, He L, et al. (2022). Construção do sistema integrado de DPCR e qPCR com base no hardware de baixo custo disponível comercialmente. Analista. 147 (15), 3494-3503. doi: 10.1039/d2an00694d. Se: 3.6

 

6. Sawadogo Y, Galal L, Belarbi E, et al. (2022). Epidemiologia genômica de SARS-CoV-2 no oeste de Burkina Faso, África Ocidental. Vírus. 14 (12), 2788. Doi: 10.3390/v14122788. Se: 4.7

 

7. Lopez-Farfan D, Yerbanga RS, Parres-Mercader M, et al. (2022). Prevalência de SARS-CoV-2 e co-infecção com malária durante a primeira onda da pandemia (o caso Burkina Faso). Front Public Health. 10, 1048404. Doi: 10.3389/fpubh.2022.1048404. Se: 6.2

 

8. Wang K, Li B, Guo Y, et al. (2022). Um sistema de PCR digital integrado com alta universalidade e baixo custo para detecção de ácido nucleico. Biotechnol Bioeng frente. 10, 947895. Doi: 10.3389/fbioe.2022.947895. Se: 4.

 

9. Zhang S, Zhong H, Zhou X, et al. (2022). Edição eficiente e segura de genomas de retrovírus endógenos porcinos por editor de edição de base de vários locais. Células. 11 (24), 3975. Doi: 10.3390/células11243975. Se: 5.1

 

10. Xia L, Zhuang J, Zou Z, et al. (2022). Chip de reação em cadeia da polimerase digital direta para a detecção da mutação EGFR T790M no plasma. Talanta. 237, 122977. doi: 10.1016/j.talanta.2021.122977. Se: 6.1

 

11. Yin J, Xia L, Zou Z, et al. (2022). Um chip de PCR digital direto e multiplex para mutação EGFR . Talanta. 250, 123725. Doi: 10.1016/j.talanta.2022.123725. Se: 6.1

 

12. Wang Y, Liu C, Zhang N, et al. (2022). O anticorpo anti-Padi4 suprime o câncer de mama reprimindo a fibronectina citrulinada no microambiente tumoral. Farmacother biomed. 153, 113289. Doi: 10.1016/j.biopha.2022.113289. Se: 6.9

 

13. Huang R, Di K, Adeel K, et al. (2022). A exploração do biossensor ultrassom-ultrassocial baseado em círculo ramificado de gotículas ramificadas para a detecção de vesículas extracelulares derivadas de células gástricas derivadas de células. Mater Today Advs. 16, 100296. doi: 10.1016/j.mtadv.2022.100296 . Se: 8.1

 

14. Fei Z, Cheng C, Wei R, et al. (2022). As contas magnéticas não reversíveis de super-hidrofobicidade não regulam a queda de acidros acionados por flipping (símbolo) regulam a desvantagem de ligação de ácidos nucleicos para detecção ultra-sensível. Chem Eng J. 431 (1), 133953. Doi: 10.1016/j.cej.2021.133953 . Se: 13.3

 

15. Huang R, Di K, Adeel K, et al. (2022). Detecção livre de lavagem de vesículas extracelulares derivadas de células cancerígenas com base na amplificação do círculo ramificando digital de gotículas. Ssrn. doi: 10.2139/ssrn.4003111. Se: 0,29

 

16. Li J, Lin W, Du P, et al. (2022). Comparação do qPCR de transcrição reversa e PCR digital de gotículas para a detecção de SARS-CoV-2 em amostras clínicas de pacientes hospitalizados. Diagnóstico microbiol infect dis. 103 (2), 115677. Doi: 10.1016/j.diagmicrobio.2022.115677. Se: 2.1

 

 

17. Bard DJ, Babady NE. (2022). Os sucessos e desafios dos testes moleculares SARS-CoV-2 nos Estados Unidos. Clin Lab Med. 42 (2): 147-160. doi: 10.1016/j.cll.2022.02.007. Se: 1.7

 

18. Diego JGB, Fernández-Soto P, Muro A. (2022). O futuro dos diagnósticos de amplificação de ácido nucleico do ponto de atendimento após Covid-19: Hora de caminhar. Int j mol sci. 23, 14110. Doi: 10.3390/ijms232214110 . se: 4.9

 

19. Nyaruaba R, Mwaliko C, Dobnik D, et al. (2022). Aplicações digitais de PCR na era SARS-COV-2/COVID-19: um roteiro para futuros surtos. Clin Microbioly Rev. 35: E00168-21. doi: 10.1128/cmr.00168-21 . Se: 19.0

2021

1. Yu Cy, Chan KG, Yean CY, et al. (2021). Testes de diagnóstico baseados em ácido nucleico para a detecção SARS-CoV-2: uma atualização. Diagnóstico (Basileia). 11 (1): 53. doi: 10.3390/diagnóstico11010053. Se: 3.0

 

2. Niu C, Wang X, Zhang Y, et al. (2021). Avaliação interlaboratória da quantificação do RNA SARS-COV-2 por PCR digital de transcrição reversa. Anal Bioanal Chem. 413 (29), 7195-7204. doi: 10.1007/s00216-021-03680-2. Se: 3.8

 

3. Zhou L, Yao M, Zhang X, et al. (2021). Respiração-. SARS-COV-2 ardentes e superficiais em hospitais. J Aerossol Sci. 152, 105693. Doi: 10.1016/j.jaerosci.2020.105693. Se: 4.5

 

4. Chen B, Jiang Y, Cao X, et al. (2021). PCR digital de gotículas como uma ferramenta emergente na detecção de ácidos nucleicos de patógenos em doenças infecciosas. Clin Chim Acta. 517, 156-161. doi: 10.1016/j.cca.2021.02.008. Se: 3.2

 

5. Fei Z, Wei R, Cheng C, Xiao P. (2021). Uma nova abordagem para a detecção bioluminescente do gene SARS-CoV-2 ORF1AB , acoplando a amplificação de transcrição reversa do RNA isotérmica com uma abordagem de PCR digital. Int j mol sci. 22, 1017. Doi: 10.3390/ijms22031017. Se: 5.6

 

6. Zhang W, Zheng K, Ye Y, et al. (2021). Analisador de ácido nucleico digital de pipeta com ponta de pipeta para teste de covid-19 com amplificação isotérmica. Anal Chem. 93 (46), 15288-15294. doi: 10.1021/acs.analchem.1c02414. Se: 6.8

 

7. Xu J, Kirtek T, Xu Y, et al. (2021). PCR de gotícula digital para SARS-CoV-2 resolve casos limítrofes. Am J Clin Pathol. P155 (6): 815-822. doi: 10.1093/AJCP/AQAB041. SE: 2.3

 

8. Yu Cy, Chan KG, Yean CY, et al. (2021). Testes de diagnóstico baseados em ácido nucleico para a detecção SARS-CoV-2: uma atualização. Diagnóstico (Basileia). P11 (1): 53. doi: 10.3390/diagnóstico11010053. SE: 3.0

 

9. Asrani P, Eapen MS, Chia C, et al. (2021). Abordagens de diagnóstico no CoVID-19: atualizações clínicas. Expert Rev Respir Med. 15 (2): 197-212. doi: 10.1080/17476348.2021.1823833. Se: 2.9

 

10. Parikh BA, Farnsworth CW. (2021). Avaliação laboratorial de SARS-CoV-2 na pandemia covid-19. Best Pract Res Clin Rheumatol. 35 (1): 101660. doi: 10.1016/j.berh.2021.101660. SE: 4.1

 

11. Kabir MA, Ahmed R, Iqbal SMA, et al. (2021). Diagnóstico para Covid-19: status atual e perspectivas futuras. Expert Rev Mol Diagnostics. 21 (3): 269-288. doi: 10.1080/14737159.2021.1894930. Se: 3.9

 

12. Pérez-López B, Mir M. (2021). Tecnologias de diagnóstico comercializadas para combater SARS-Cov2: vantagens e desvantagens. Talanta. 225: 121898. doi: 10.1016/j.talanta.2020.121898. SE: 6.1

 

13. Pokhrel P, Hu C, Mao H. (2021). Detectando o Coronavírus (Covid-19). Sensor ACS. 5 (8): 2283-2296. doi: 10.1021/acSsensors.0c01153. SE: 8.3

2020

1. Lu R, Wang J, Li M, et al. (2020). Detecção SARS-CoV-2 usando PCR digital para diagnóstico de covid-19, monitoramento do tratamento e critérios para descarga. Medrxiv . doi: 10.1101/2020.03.24.20042689

 

2. Shi B, Wu D, Jiang Y, et al. (2020). Dispositivo de preparação de gotículas de emulsificação vertical de etapa off-chip aplicada para gotículas de PCR digital. Interfaces de advogado. 2001074. Doi: 10.1002/Admi.202001074 . Se: 6.4

 

3. Suo T, Liu X, Feng J, et al. (2020). DDPCR: Uma ferramenta mais precisa para a detecção SARS-CoV-2 em amostras de carga viral baixa. Micróbios emergentes infectados. 9 (1), 1259-1268. doi: 10.1080/22221751.2020.1772678. Se: 8.4

 

4. Yin J, Zou Z, Yin F, et al. (2020). Um chip de reação em cadeia da polimerase digital auto-formal para análise genética multiplex. ACS Nano. 14 (8), 10385-10393. doi: 10.1021/acsnano.0c04177. Se: 15.8

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